DNA连接反应
DNA连接反应概述编辑本段
利用DNA连接酶把载体DNA和要克隆的目的DNA片段连接在一起,成为一个完整的重组分子,这就是分子克隆中常说的连接反应。当载体DNA和外源DNA末端都是由一种产生粘性末端的内切酶切割产生(同尾酶也可),或两者末端被接上一段互补的多聚体尾巴,经退火后可形成新的重组分子。连接后产生的重组分子中仍保留外源DNA两端的限制性内切酶切点,便于再次取出克隆的DNA段。
DNA连接的基本原理编辑本段
外源DNA片段和线状质粒载体的连接,是在双链DNA5'磷酸和相邻的3'羟基之间形成新的共价键。如质粒载体的两条链都带5'磷酸,可生成4个新的磷酸二酯键;若质粒DNA已去磷酸化,则仅能形成2个新的磷酸二酯键,产生的杂交分子带有2个单链切口,导入感受态细胞后可被修复。相邻的5'磷酸和3'羟基间磷酸二酯键的形成可在体外由大肠杆菌DNA连接酶或T4噬菌体DNA连接酶催化。在有克隆用途中,T4噬菌体DNA连接酶是首选,因其在标准条件下能有效连接平端DNA片段。
连接反应的动力学与参数编辑本段
DNA一端与另一端的连接是双分子反应,反应速度完全由互补末端的浓度决定。当连接混合物中只含有一种DNA(如用粘端限制酶切割的磷酸化载体DNA),DNA浓度低时有利于分子内连接(重新环化);DNA浓度高时有利于分子间连接,形成二聚体或寡聚体。Dugaiczyk等从理论上探讨了DNA浓度对连接产物性质的影响,关键参数包括:
- j:DNA分子一个末端在同一分子另一末端附近的有效浓度,与DNA长度成反比,且对给定长度DNA为常数,与浓度无关。j = [3/(3πlb0)]^{3/2},其中l为DNA长度(cm),b为随机卷曲区段长度。
- i:溶液中所有互补末端的浓度测值,i = 2NoMx10^{-3}末端/ml,No为阿伏伽德罗常数,M为DNA摩尔浓度(mol/L)。
当j=i时,分子内与分子间连接速率相等;j>i利于环化;i>j利于多联体形成。对于含线状质粒和外源DNA片段的混合物,当i是j的2-3倍且外源DNA末端浓度为质粒的2倍时,有效重组体产量最大,终产物约40%为单体质粒与外源DNA的嵌合体。
粘端连接实验方法编辑本段
1. 用适当限制酶消化质粒和外源DNA,必要时用碱性磷酸酶处理质粒DNA。纯化后DNA用TE(pH7.6)溶液调整为100 ng/μl。
2. 设立连接反应混合物:将0.1 μl载体DNA转入无菌微量离心管,加等摩尔量外源DNA,加水至7.5 μl,45℃加热5分钟解链后冷却至0℃。加入:10x T4噬菌体DNA连接酶缓冲液1 μl,T4连接酶0.1 Weiss单位,5 mmol/L ATP 1 μl,16℃温育1-4小时。缓冲液组成为:200 mmol/L Tris·Cl (pH7.6),50 mmol/L MgCl₂,50 mmol/L二硫苏糖醇,500 μg/ml牛血清白蛋白(可选)。对照反应需包含仅载体或仅外源DNA的样品。
3. 每个样品取1-2 μl转化大肠杆菌感受态细胞。载体DNA浓度应满足j:i>1且<3,对pUC18大小质粒约为20-60 μg/ml。外源DNA末端浓度应等于或稍高于载体DNA。
平端DNA连接编辑本段
T4噬菌体DNA连接酶可催化平端DNA片段连接,此反应效率低,需满足:低浓度ATP(0.5 mmol/L)、无亚精胺等多胺、极高连接酶浓度(50 Weiss单位/ml)和高浓度平端。加入凝聚剂如聚乙二醇(PEG8000)或氯化六氨合高钴可大幅提高连接效率并改变产物分布。
聚乙二醇(PEG8000)的使用
1. 用去离子水配制40% PEG8000贮存液,分装冰冻保存。在15% PEG8000连接混合物中,刺激效应最显著。除PEG和酶外,其他组分于0℃混合,加室温PEG8000混匀,加酶后20℃温育。
2. 连接混合物含0.5 mmol/L ATP和5 mmol/L MgCl₂时刺激最显著。15% PEG8000可提高粘端连接效率10-100倍,产物主要为串联多联体。
3. PEG8000可刺激短至8个核苷酸的合成寡聚物平端连接。
氯化六氨合高钴的使用
1. 10 mmol/L贮存液于-20℃保存,连接混合物中终浓度1.0-1.5 μmol/L时刺激最大。平端连接效率提高约50倍,粘端提高约5倍。
2. 在30 mmol/L KCl存在下,对平端连接仍有刺激,但产物分布改变,环状DNA占优势。
3. 不能显著提高合成寡核苷酸连接速率。
高效DNA连接系统编辑本段
宝生物工程(大连)有限公司的DNA连接系统(TaKaRa DNA Ligation Kit Ver.2)可缩短反应时间至30分钟,不受DNA结构影响。试剂盒内容包括:Solution I(酶溶液)250 μl×3,Solution II(缓冲液)750 μl×1。使用方法:取5 μl DNA溶液,加等量Solution I,16℃反应30分钟,直接用于转化或体外包装。对于线形DNA连接(如λgt11/EcoRI臂插入pBR322/EcoRI片段),需使用Solution II和两倍量Solution I,26℃反应10分钟。连接效率高于传统T4连接酶16小时反应。
参考资料编辑本段
- Dugaiczyk A, Boyer HW, Goodman HM. Ligation of EcoRI endonuclease-generated DNA fragments into linear and circular structures. J Mol Biol. 1975;96(1):171-184.
- Ferretti L, Sgaramella V. Specific and reversible inhibition of the blunt end joining activity of T4 DNA ligase. Nucleic Acids Res. 1981;9(15):3695-3705.
- Pheiffer BH, Zimmerman SB. Polymer-stimulated ligation: enhanced blunt- or cohesive-end ligation of DNA or deoxyribooligonucleotides by T4 DNA ligase in polymer solutions. Nucleic Acids Res. 1983;11(22):7853-7871.
- Rusche JR, Howard-Flanders P. Hexamine cobalt chloride stimulates T4 DNA ligase-catalyzed ligation of blunt ends. Nucleic Acids Res. 1985;13(6):1997-2008.
- Sgaramella V, Khorana HG. Total synthesis of the structural gene for the precursor of a tyrosine suppressor transfer RNA from Escherichia coli. J Mol Biol. 1972;72(2):427-444.
- Weiss B, Jacquemin-Sablon A, Live TR, Fareed GC, Richardson CC. Enzymatic breakage and joining of deoxyribonucleic acid. VI. Further purification and properties of polynucleotide ligase from Escherichia coli infected with bacteriophage T4. J Biol Chem. 1968;243(17):4543-4555.
- Zimmerman SB, Pheiffer BH. Macromolecular crowding allows blunt-end ligation by DNA ligases from rat liver or Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci USA. 1983;80(19):5852-5856.
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