生物百科  > 所属分类  >  分子生物学   

实时定量PCR

实时定量PCR,英文名 Real-time Quantitative Polymerase Chain Reaction,通常缩写为 qPCR 或 实时PCR。它是一种在聚合酶链式反应过程中,通过荧光信号对目标DNA序列进行实时监测精确定量的分子生物学技术。qPCR彻底改变了基因表达分析、病原体检测和基因分型等领域,是现代生命科学和医学诊断的核心工具。

核心原理

与传统PCR在反应结束后通过凝胶电泳进行终点检测不同,qPCR的关键在于“实时”。其核心原理是:在PCR反应的每一个循环中,通过测量与扩增产物成比例的荧光信号强度,实现对起始模板数量的动态追踪和计算。

荧光化学基础

实现实时监测主要依赖于两类荧光化学物质:

  1. DNA结合染料(非特异性检测)

    • 代表物质SYBR Green I

    • 原理:该染料可特异性地结合至所有双链DNA的小沟中,结合后荧光强度显著增强。随着PCR产物的积累,荧光信号成比例增加。

    • 优点:成本低,使用简便。

    • 缺点:缺乏特异性,会与任何双链DNA(如引物二聚体、非特异扩增产物)结合,可能导致假阳性信号,必须通过熔解曲线分析来验证产物的特异性。

  2. 荧光标记探针(特异性检测)

    • 代表技术TaqMan探针法(水解探针法)。

    • 原理:使用一条序列特异性的寡核苷酸探针,其两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。当探针完整时,荧光共振能量转移导致报告荧光被淬灭。在PCR延伸阶段,Taq DNA聚合酶的5‘→3’核酸外切酶活性会将与模板结合的探针水解,使报告基团与淬灭基团分离,从而释放荧光信号。荧光信号强度与扩增产物的数量成正比。

    • 优点:特异性极高,可进行多重检测(使用不同颜色的荧光标记)。

    • 缺点:探针合成成本高,设计更复杂。

工作流程与数据分析

标准工作流程

  1. 样品与试剂准备:提取样品中的总RNA或DNA。若分析基因表达(mRNA),需先将RNA通过逆转录反应合成cDNA。

  2. 反应体系配制:将模板、特异性引物(和探针)、PCR Master Mix(含DNA聚合酶、dNTPs、缓冲液等)加入专用反应管或孔板中。

  3. 上机运行:将样品置于实时定量PCR仪中,仪器在预设的循环程序(变性、退火、延伸)下运行,并在每个循环结束后自动检测各孔的荧光值

  4. 数据分析:运行结束后,使用配套软件分析数据。

关键数据分析概念

  • 扩增曲线:以循环数为横坐标,荧光强度为纵坐标绘制的曲线。曲线分为基线期、指数扩增期和平台期。

  • 阈值:在指数扩增早期人为设定的一个荧光值水平。Ct值,即循环阈值,指每个反应管的荧光信号达到设定阈值时所经历的循环数。

  • Ct值的意义起始模板量越多,Ct值越小;反之亦然。Ct值相差1,代表起始模板量相差约2倍(假设扩增效率为100%)。

  • 标准曲线法(绝对定量):使用已知浓度的标准品(如质粒DNA)制作Ct值与起始拷贝数对数值的标准曲线,通过待测样品的Ct值计算其绝对拷贝数。

  • 比较Ct法(相对定量):最常用的基因表达分析方法。通过比较目标基因与内参基因(如GAPDH, β-actin)的Ct值,计算目标基因的相对表达量(如2^(-ΔΔCt)法)。内参基因用于校正样品间在RNA量、质量和逆转录效率上的差异。

分析类型核心方法主要应用
绝对定量标准曲线法病原体载量测定(如病毒拷贝数)、转基因拷贝数确定。
相对定量比较Ct法 (2^(-ΔΔCt))基因表达差异分析(如处理组 vs. 对照组)、microRNA表达分析。
定性分析熔解曲线分析 / Ct值有无基因分型(如SNP检测)、病原体筛查、转基因成分鉴定。

表格宽度设定:此表格宽度会自动适应页面布局。

主要应用

  1. 基因表达分析:定量检测不同组织、发育阶段、疾病状态或药物处理下,特定mRNA的表达水平变化,是功能基因组学研究的基础。

  2. 病原体检测与定量:快速、灵敏、定量地检测病毒(如HIV, HCV, SARS-CoV-2)、细菌、寄生虫的核酸,用于临床诊断、疗效监测和流行病学调查。

  3. 基因分型:利用等位基因特异性探针或熔解曲线分析,进行单核苷酸多态性、突变检测和转基因鉴定。

  4. microRNA分析:定量检测长度短、序列高度相似的microRNA分子。

  5. 食品安全与转基因检测:检测食品中的致病微生物或转基因成分。

优点与局限性

优点

  • 高灵敏度:可检测极低拷贝数的模板(甚至单拷贝)。

  • 高特异性:尤其是使用探针法时。

  • 宽动态范围:可检测跨越多个数量级的起始模板量(通常可达7-8个数量级)。

  • 高通量与自动化:可同时处理96或384个样品,减少人为误差。

  • 无需后处理:闭管检测,避免了凝胶电泳的开盖操作,降低了污染风险。

局限性

  • 成本较高:仪器和试剂(尤其是探针)昂贵。

  • 对抑制剂敏感:样品中残留的蛋白质、酚类、血红素等物质会抑制PCR反应,影响定量准确性。

  • 标准化挑战:特别是相对定量时,内参基因的选择和稳定性验证至关重要。

  • 仅能检测已知序列:需要预先知道目标序列以设计引物和探针。

相关技术与概念

  • 逆转录定量PCR:用于分析RNA,先经过逆转录步骤生成cDNA,再进行qPCR。

  • 数字PCR:qPCR技术的进一步发展,通过将样品分割成数万个微反应单元进行终点PCR,然后通过统计阳性单元数进行绝对定量,无需标准曲线,灵敏度更高,抗抑制剂能力更强。

  • 高分辨率熔解曲线分析:一种基于饱和染料的突变扫描和基因分型技术,常与qPCR联用。

参考文献

  1. 奠基性方法学:Heid, C. A., et al. Real time quantitative PCR. Genome Research. 1996, 6(10): 986-994. (介绍了TaqMan探针法的原理与应用).

  2. 相对定量经典算法:Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2^(-ΔΔCT) Method. Methods. 2001, 25(4): 402-408. (提出了广泛使用的2^(-ΔΔCt)分析法).

  3. 综合指南:Bustin, S. A., et al. The MIQE guidelines: minimum information for publication of quantitative real-time PCR experiments. Clinical Chemistry. 2009, 55(4): 611-622. (提出了确保qPCR实验可重复性和数据可靠性的最低信息标准).

  4. 技术综述:VanGuilder, H. D., et al. Twenty-five years of quantitative PCR for gene expression analysis. BioTechniques. 2008, 44(5): 619-626. (回顾了qPCR技术的发展历程).

  5. 应用与实践:Kubista, M., et al. The real-time polymerase chain reaction. Molecular Aspects of Medicine. 2006, 27(2-3): 95-125. (全面综述了qPCR的原理、优化策略和应用).

附件列表


0

词条内容仅供参考,如果您需要解决具体问题
(尤其在法律、医学等领域),建议您咨询相关领域专业人士。

如果您认为本词条还有待完善,请 编辑

上一篇 过氧化物    下一篇 TaqMan探针

关键词

暂无关键词

同义词

暂无同义词